产品展厅
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产品内容
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组分 |
20 slides |
50 slides |
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YF®488 Tyramide（200×） |
10 μL |
25 μL |
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YF®555 Tyramide（200×） |
10 μL |
25 μL |
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YF®594 Tyramide（200×） |
10 μL |
25 μL |
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YF®640 Tyramide（200×） |
10 μL |
25 μL |
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YF®680 Tyramide（200×） |
10 μL |
25 μL |
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HRP-羊抗兔IgG |
50 μL |
125 μL |
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BSA |
0.32 g |
0.8 g |
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1× Tyramide Amplification Buffer |
10 mL |
25 mL |
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DAPI染色液（即用型） |
2×1 mL |
5 mL |
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抗荧光淬灭封片剂 |
0.4 mL |
1 mL |
荧光光谱数据：YF®488: 490/515 nm; YF®555: 555/565 nm; YF®594: 590/617 nm;
YF®640: 642/662 nm; YF®680: 681/698 nm
储存条件
-20℃避光保存，有效期见外包装。
产品介绍
酪胺信号放大（TSA）是一种基于辣根过氧化物酶（HRP）的催化活性对靶蛋白或核酸进行高密度原位标记的酶学检测方法。原理为酪胺Tyramide的过氧化物酶反应（已标记荧光的酪胺在HRP催化H?O?下形成共价键结合位点）产生的大量酶促产物与目标蛋白的酪氨酸残基共价结合，从而使目标蛋白标记上特异的荧光。多重标记仅需在热修复法去除非共价结合的抗体后换另一种一抗、荧光素酪胺，如此往复即可。
注意事项
1. 1× Tyramide Amplification Buffer首次使用后，建议小量分装，-20℃保存，避免反复冻融。
2. 为了防止出现假阴性、假阳性的结果，实验过程中需设置阴性对照和阳性对照。对于组织样品，建议对未染色的对照（不添加抗体或酪酰胺）进行成像，确定组织是否有自发荧光，排除对背景的影响。
3. 建议1:200稀释YF® Tyramide。较高的浓度可能会导致信号过强或背景高，建议从1:100到1:1000梯度稀释。
4. 可依次使用多个YF® Tyramide来标记同一样品的不同靶标，每次酪酰胺反应后需进行抗体剥离。
